一、百合顶芽离体诱导小鳞茎及开花球培育（论文文献综述）
韩淞名,孟庆雪,吴彦霏,闫凯丽,胡婉,樊金萍[1]（2021）在《两种雄性不育百合组培快繁体系的建立》文中研究指明以2种花色、花型良好,长势优异的雄性不育百合‘5-4’与‘5-35’为试材,采用组织培养法,研究不同消毒时间、激素浓度及不同基质配比对2种雄性不育百合组织培养过程中的影响,以期建立快速繁殖体系,为无花粉百合的大量生产提供参考依据。结果表明:最佳外植体灭菌方式为75%乙醇消毒20 s, 10%NaClO处理8 min,和75%乙醇消毒30 s, 10%NaClO处理6 min;最佳诱导培养基为MS+NAA 1.0 mg·L-1+6-BA 0.5 mg·L-1和MS+NAA 1.5 mg·L-1+6-BA 0.5 mg·L-1;最佳增殖培养基均为MS+6-BA 1.5 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1;最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.1 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1+蔗糖40 g·L-1和1/2MS+IBA 0.2 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1+蔗糖40 g·L-1;最佳移栽基质比例为蛭石∶珍珠岩∶草炭=1∶1∶1。
李慧琳[2]（2020）在《杂交百合后代微繁与促花研究》文中研究说明百合是重要的观赏花卉,具有较高的观赏和食用价值,国内外对其进行了广泛的杂交育种,通过杂交育种获得的观赏兼食用百合市场需求越来愈大。百合杂交育种的后代往往采用快速繁殖技术进行培育,通过组织培养获得的组培子球具有休眠的问题,需进行低温春化打破休眠才能进行正常的生长发育直至开花结果,一些外源物质可以促进百合杂交后代开花。因而关于观赏兼食用百合品种的微繁与促花研究直接关系到其能否产业化生产。本研究分别以兰州百合与亚洲百合品种‘Trose’、兰州百合（Lilium davidii var.unicolor Salisb）与亚洲百合品种‘Prunotto’杂交后代籽球为试验材料,进行了组培快繁技术的探究、籽球低温冷藏解除休眠技术探究及外源物质对兰州百合与亚洲百合杂交种‘Trose’的促进开花影响的这三部分研究,为百合杂种后代组培子球的产业化生产提供必要的技术支持。通过研究,获得的主要结论如下:1.组织培养试验结果表明:对于TR来说（1）启动培养基为:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA0.30mg/L.（2）增殖培养基为:MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L.（3）壮苗生根培养基为:1/2MS+NAA 0.3 mg/L+IBA 0.5 mg/L.（4）小鳞茎增大培养基:MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 1.0 mg/L+糖30g/L+琼脂粉6g/L;对于PR来说（1）启动培养基为:MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L.（2）增殖培养基为:MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA0.5mg/L.（3）壮苗生根培养基为:1/2MS+NAA 0.5 mg/L+IBA 1.0 mg/L.（4）小鳞茎增大培养基为:MS+NAA0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+糖30g/L+琼脂粉6g/L。2.低温打破休眠试验结果表明:兰州百合与亚洲百合品种‘Trose’、兰州百合与亚洲百合品种‘Prunotto’杂交后代籽球在4℃冰箱内冷藏均可有效解除休眠。TR品种需要35d解除休眠,PR品种需要42d解除休眠。在低温冷藏期间,随着冷藏时间的延长,鳞茎内的可溶性糖含量积累,淀粉含量逐渐下降,内源激素含量活跃变化、酚类物质含量增加,3种酚类物质酶活性发生改变,鳞茎休眠被打破。3.促花研究试验结果表明:1.6%Ca Cl2溶液浸泡籽球10h是最利于TR的促花干预方法。且不同的施钙浓度均能提高TR的开花品质与花期,对鳞茎内的内源激素和碳水化合物产生明显影响,其中IAA、GA3、可溶性糖以及淀粉对TR到花日数具有显着的促进作用。
郑鑫[3]（2017）在《亚洲百合无性繁殖小鳞茎技术的研究》文中研究指明百合（Lilium spp）是多年生球根草本花卉,系百合科（Liliaceae）、百合属（Lilium）。百合花茎高挺,花大色艳,颜色各异,姿态优雅,芳香宜人,而且生命力顽强具有丰富的艺术观赏价值,常被人们视作纯洁、光明和幸福的象征,又寓意着百年好合、幸福美满,并且百合的球茎具有很高的食用、药用价值还有美容等功效,从而使它在球根花卉中脱颖而出,是世界认可的第五大切花。亚洲百合’普端头’（Liliam asiatic Hybrids ’Prato’）是优秀的栽培品种之一。花橙红色,无香味,具有很强抗逆性,并且可以在东北地区露地越冬栽培。本实验以亚洲百合普瑞头的鳞片为实验材料,探讨了两种无性繁殖方法的最适繁殖条件。以及在鳞片扦插繁殖过程中母鳞片与小鳞茎的碳水化合物代谢与小鳞茎的形成、生长、膨大的关系。并采用解剖学的方法探究亚洲百合普瑞头鳞片在扦插繁殖过程中母鳞片和小鳞茎生长发育过程的形态变化,为百合种球工厂化生产提供理论参考和实践指导。本研究主要得到的结果如下:（1）利用普瑞头的外层鳞片、中层鳞片、内层鳞片对比可知,外层鳞片扦插效果最好,生长率和小苗的生长强壮程度均高于鳞茎的内层鳞片和中层鳞片。对百合鳞片的扦插基质,植物生长调节剂的用量,处理时间及鳞片的扦插部位进行了筛选,结果显示,各个因素之间差异显着,普瑞头在Q10的处理下生长状况最好,即扦插基质为草炭土+蛭石（1:1）,植物生长调节剂为100mg/L6-BA+100mg/LIBA,处理的时间为3h,鳞片的部位为鳞片的下部。各因素的影响能力由强至弱依次为:鳞片的部位>植物生长调节剂的种类与浓度>处理时间>扦插的基质。（2）利用普瑞头百合的中、外层鳞片为外植体,最佳的灭菌时间为15 min,最适合诱导小鳞茎的培养基为:MS+1.5mg/L6-BA+0.2mg/LNAA,分化率为84%,产生不定芽的个数为148个。（3）在扦插过程中,母鳞片中碳水化合物整体呈下降趋势;而在小鳞茎中呈现上升趋势,在扦插初期（0-21 d）,说明小鳞茎的形成主要依靠消耗母鳞茎中的碳水化合物来为自身提供养分,同时也说明小鳞茎的形成是一个碳水化合物积累的过程。在扦插中期（21-41d）,母鳞片和小鳞茎中的碳水化合物的含量都呈相对稳定的状态。在扦插后期（42d以后）,母鳞片中的碳水化合物含量再一次大幅度下降,小鳞茎中碳水化合物的含量明显上升,说明小鳞茎的膨大阶发育同样需要大量的消耗母鳞片的碳水化合物。（4）百合的小籽球萌发于近轴基部切口内部10层左右的的薄壁细胞处。小籽球的萌发生长发生过程顺次经过了启动时期、生长锥形成时期、叶原基形成时期和小鳞茎形成时期。
朱丽芳[4]（2014）在《老鸦瓣组织培养及试管鳞茎诱导技术研究》文中提出老鸦瓣（Tulipa edulis （Miq.） Baker）为百合科郁金香属药用植物,中药材光慈姑（Bulbus tulipae）为其除去绒毛后的干燥鳞茎。光慈姑味甘,性寒,有毒；具有解毒散结,行血化瘀之功效；主治咽喉肿痛,瘰疬,痈疽,疮肿,产后瘀滞。随着中药产业对光慈姑需求量的不断扩大,供需矛盾日益突出。目前光慈姑主要来源于野生,关于老鸦瓣及光慈姑各方面的研究内容较少,人工栽培存在繁殖系数低下等问题。组织培养可在短期内提供大量优质种苗,试管苗瓶内结球可有效提高生产效率。通过对老鸦瓣鳞茎沙藏处理打破休眠,筛选适宜的外植体、植物生长物质、培养条件,诱导出试管苗,并对试管苗进行试管鳞茎诱导,建立起老鸦瓣组织培养及试管鳞茎诱导体系,得出如下结果：（1）老鸦瓣鳞茎在0-2℃低温下沙藏120 d,以75%酒精浸泡30s和0.1% HgCl2浸泡12～15 min配合消毒或采用升汞连续二次消毒法（6+6）min,可在无激素MS培养基诱导产生芽茎（短缩芽茎）、鳞芽；升汞浸泡时间因鳞茎大小而异。诱导产生的芽茎（短缩芽茎）、鳞芽即可为初代外植体。（2）老鸦瓣芽茎（分为芽茎切段、芽茎顶端）和短缩芽茎较适宜诱导愈伤组织,而鳞芽较适合诱导不定芽；在MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA2.0 mg·L-1的培养基上,芽茎顶端愈伤诱导率为78.54%,短缩芽茎顶端的愈伤诱导率为85.46%,鳞芽在MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.01 mg·L-1的培养基中有较高的不定芽诱导率89.53%；适宜的愈伤组织增殖培养基为MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA2.0 mg·L-1;以黄白、质密,表面光滑湿润的团块状愈伤组织有利于芽分化,适宜的芽分化培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.2 mg·1/1,芽分化率为66.21%,平均芽数为1.73个。愈伤分化的丛生芽最适宜的增殖培养基为MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA0.2mg·L-1,增殖系数为2.48。（3）老鸦瓣冷藏芯芽及子茎（芽茎顶端膨大形成的子鳞茎）等器官为外植体,可直接诱导不定芽。子茎在MS+TDZ 2.0 mg·L-1+NAA 4.0 mg·L-1的培养基中直接诱导不定芽效果最好,不定芽得率为72.92%；芯芽诱导不定芽的适宜培养基为MS+TDZ 2.0 mg·L-1+NAA 2.0 mg·L-1;以子茎不定芽适宜的增殖培养为MS+TDZ 0.2 mg·L-1+NAA 0.2 mg·L-1,丛生芽增殖系数达2.23。（4）老鸦瓣芽茎诱导的愈伤分化的丛生芽继代增殖壮苗后即为无根试管苗,可诱导试管鳞茎。丛生芽必须经历低温培养才能诱导出试管鳞茎。蔗糖、6-BA和大量元素浓度是影响试管鳞茎形成的主要因素,NAA对试管鳞茎诱导影响不显着。芽丛（2-5个一簇）接入MS+6.BA0.1 mg·L-1+NAA0.01 mg·L-1+蔗糖80.0 g·L-1培养基后,低温（5±1）℃培养60 d再转入高温（23±2）℃培养,形成的试管鳞茎最多。培养基中添加多效唑,对试管鳞茎形成没有明显的促进作用。而培养基中添加水杨酸时,高浓度（3.0 mg·L-1）水杨酸可以促进试管鳞茎形成。试管鳞茎诱导高温阶段,以（23±2）℃、黑暗培养有利于其形成。
徐茜,余鸿燕,徐燕,黎华,廖采琴[5]（2014）在《重庆野生百合花蕾诱导再生植株技术研究》文中指出为了重庆野生百合资源的有效保护和开发利用,以重庆地区野生百合花蕾为试验材料,采用植物组织诱导培养的方法对其再生植株技术进行了研究。结果表明:以即将开放的百合花蕾为外植体材料,消毒容易,无污染;通过对花蕾各器官（花冠、花托、花丝、花药、花柱、柱头、花梗）的诱导培养,表明试验所选的1号培养基MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L能诱导花冠、花托、花丝出芽,2号培养基MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L仅能诱导花冠出芽;幼芽增殖以MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L的增殖系数最高,为3.2,增殖幼苗生长健壮;生根培养以14号培养基（MS+NAA 0.4 mg/L）诱导百合生根最佳,生根率为100%;移栽结果以18号培养基（MS+IBA 0.5 mg/L）的生根培养苗成活率较高,达到了85%。
黄敏玲,陈诗林,钟淮钦[6]（2009）在《亚洲百合试管鳞茎诱导、开花球培育及促成栽培技术研究》文中提出以亚洲百合顶芽形成的丛芽体为材料,进行试管小鳞茎诱导及小鳞茎培育开花球研究。结果表明:激素、蔗糖、光照强度及低温处理等因素影响小鳞茎诱导,丛芽在MS+IBA 0.5 mg/L+4%蔗糖培养基上,光照强度1.5 klx培养30d后,小鳞茎诱导率100%,平均每株诱导小鳞茎1.5个,小鳞茎直径0.96 cm;小鳞茎经5℃低温处理2周后再生形成的鳞茎,移栽后继续生长2个月后才开始休眠。直径0.8 cm以上的试管鳞茎,经5～8℃低温处理4周后,在福建省南平海拔800m处栽培8个月,收获的种球中45.8%达到商品球标准,开花性状稳定。以上述培育的商品球为材料,探讨了赤霉素结合低温处理和设施栽培对亚洲百合开花的影响。结果表明:低温（5℃,56 d）冷藏处理结合设施栽培,花期提早82 d,开花率96.5%;赤霉素200mg/L处理加低温冷藏,花期提早92d,开花率97.3%;低温冷藏后用赤霉素200～300mg/L处理,可显着提高花茎长度,但对花期没有影响。设施栽培比对露地栽培花期提早31d,开花率98.5%。
周俊辉,周厚高,林丽婵,卢俊图[7]（2008）在《火百合花器的鳞茎诱导和增殖培养研究》文中研究指明采用4.5 ～6.5cm长、花苞青色未开放的火百合花蕾作材料,切取其子房、花柱、花丝为外植体进行鳞茎诱导,结果表明:花丝的鳞茎诱导率最高,其次是花柱,子房的诱导率最低。以子房和花柱为外植体诱导出的鳞茎个体大小不一（1～7mm） ,以花丝为外植体诱导出的鳞茎则普遍偏小,但较整齐一致（3～4mm） ;小鳞茎诱导的最佳6-BA浓度是1.0mg/L。研究了基本培养基、6-BA浓度、NAA浓度对小鳞茎增殖的效应及不同蔗糖浓度对小鳞茎增重的影响,结果表明:小鳞茎增殖的最佳培养基是:MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L,4 %蔗糖对鳞茎增重效果最好。
陈诗林,黄敏玲[8]（2007）在《低温和赤霉素对亚洲百合开花及鳞茎繁殖的效应》文中认为以亚州百合为试材,探讨了低温冷藏、设施栽培和赤霉素结合低温处理对亚洲百合开花及新球繁殖的效应。结果表明:亚洲百合鳞茎在适宜温度5℃下冷藏56 d,周径12 cm以上的种球开花率达到95%以上;设施栽培（遮荫、保温及补光）比对照（露地栽培）花期提早31 d,开花率98.5%;低温（5℃,56 d）冷藏处理结合设施栽培,花期提早82 d,开花率96.5%;赤霉素200 mg/L处理加低温冷藏,花期提早92 d,比冷藏处理提早10 d,开花率97.3%;低温冷藏后用赤霉素200300 mg/L处理,可显着提高花茎长,但对花期没有影响;低温或低温结合赤霉素处理,新球周径比常规栽培显着提高,而新球繁殖数显着降低;二次开花显着影响新球发育,籽球退化,需复壮栽培。
赵欢蕊,刘雅莉,王跃进[9]（2007）在《农杆菌介导的普利安娜百合鳞茎直接分化受体系统的建立》文中指出以亚洲百合"普利安娜"为材料,通过不定芽诱导、植株再生及抗生素敏感性试验,建立了百合直接分化受体系统。结果表明:鳞片和试管苗鳞片叶不定芽分化培养基均以MS+BA2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L为最佳;试管苗小叶柄分化不定芽培养基以MS+BA1.0 mg/L+NAA0.3 mg/L为宜;1/2MS+IBA0.5 mg/L+90 g Sucrose+暗培养1个月后再光照培养可诱导形成试管苗鳞茎;生根的适宜培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L+0.1%活性炭;卡那霉素筛选浓度鳞片为150 mg/L,鳞片叶为100 mg/L。
赵欢蕊[10]（2007）在《农杆菌介导的ACO基因RNA干扰表达载体转化百合的研究》文中进行了进一步梳理亚洲系杂种百合是世界最主要的切花品种之一。但与东方百合相比亚洲百合花期更短,严重影响了它的观赏价值和瓶插寿命,因此培育出花期较长的亚洲百合新品种显得尤为迫切与重要。已有的研究结果表明:百合为乙烯释放型花卉,百合花朵开放时,伴随着乙烯的释放而衰老。ACO是催化乙烯生成的最后一步关键酶,控制着乙烯的生成速率。因此,通过RNA干扰技术可使内源的ACO基因转录的mRNA被降解,对ACO基因进行有效沉默,从而抑制乙烯生成,达到延长花期的目的。本研究以亚洲百合‘普利安娜’为试材,建立了直接分化受体系统和遗传转化体系,并通过农杆菌介导的ACO基因RNA干扰表达载体转化亚洲百合,获得转化植株,为百合遗传转化提供依据。本研究取得的主要结果如下:1.建立了直接分化受体系统（1）鳞块和鳞片叶不定芽分化最佳培养基均为MS+BA2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L;（2）小叶柄分化不定芽培养基以MS+BA1.0mg/L+NAA0.3mg/L为宜;（3）1/2MS+IBA0.5 mg/L +90g/L蔗糖+暗培养1个月后再光照培养可诱导试管苗鳞茎膨大;（4）生根的适宜培养基为1/2MS+IBA0.5 mg/L +0.1%活性炭;（5）卡那霉素抗性筛选结果表明:鳞块以150 mg/L为宜,鳞片叶以100 mg/L为宜。2.建立了遗传转化体系（1）鳞片叶和鳞块侵染最佳时间和浓度为:鳞片叶用OD600=0.3左右的菌液侵染8分钟最好,鳞块用OD600=0.8左右的菌液侵染30分钟最好;（2）乙酰丁香酮能明显提高百合转化植株的再生频率,MS重悬液和固体共培养基中均添加20 mg/L AS活化菌液2小时用于转化可以提高抗性植株再生率。（3）不经过预培养的鳞块侵染后污染率最低,有利于百合鳞块的转化;（4）去除大量元素中的NH4NO3有利于农杆菌的附着,使转化率提高1倍。3.本研究获得了106株卡那霉素抗性植株,并对其中55株进行了PCR检测,获得了4株PCR阳性植株。
二、百合顶芽离体诱导小鳞茎及开花球培育（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、百合顶芽离体诱导小鳞茎及开花球培育（论文提纲范文）
（1）两种雄性不育百合组培快繁体系的建立（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 培养条件 |
| 1.2.2 鳞片消毒灭菌 |
| 1.2.3 不定芽的诱导培养 |
| 1.2.4 继代增殖培养 |
| 1.2.5 生根培养 |
| 1.2.6 组培苗的驯化移栽 |
| 1.3 项目测定 |
| 1.4 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同消毒组合对鳞片消毒效果的影响 |
| 2.2 不同激素浓度对不定芽诱导的影响 |
| 2.3 不同激素浓度对不定芽增殖的影响 |
| 2.4 不同激素浓度对不定芽生根的影响 |
| 2.5 不同基质对生根苗驯化移栽的影响 |
| 3 讨论与结论 |
（2）杂交百合后代微繁与促花研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| abstract |
| 1.前言 |
| 1.1 引论 |
| 1.2 百合杂交育种 |
| 1.2.1 百合分类 |
| 1.2.2 兰州百合与亚洲百合育种现状 |
| 1.3 百合杂交后代组培快繁体系的建立 |
| 1.3.1 外植体对组织培养的影响 |
| 1.3.2 外植体灭菌处理 |
| 1.3.3 基本培养基及培养基添加成分的配比 |
| 1.4 百合低温解除休眠的研究 |
| 1.4.1 冷藏期间碳水化合物的变化 |
| 1.4.2 冷藏期间内源激素含量的变化 |
| 1.4.3 冷藏期间酚类物质及其酶的含量变化 |
| 1.4.3.1 苯丙氨酸解氨酶(PAL)、多酚氧化酶(PPO)和过氧化物酶(POD)的研究进展 |
| 1.5 钙对植物的影响 |
| 1.5.1 钙对植物生长的影响 |
| 1.5.2 钙对植物开花的影响 |
| 1.5.3 植物开花与内源激素的关系 |
| 1.5.4 植物开花与内源营养物质的关系 |
| 1.6 本研究的目的意义 |
| 1.7 技术路线 |
| 2.TR与PR无菌体系的建立 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 不同外植体初代诱导培养基的比较 |
| 2.2.2 以小鳞茎为外植体的启动培养基的筛选 |
| 2.2.3 以鳞片为外植体的启动培养基激素配比筛选 |
| 2.2.4 增殖培养基的筛选 |
| 2.2.5 生根壮苗培养基的筛选 |
| 2.2.6 成球培养基的筛选 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 不同外植体初代诱导培养基的比较 |
| 2.3.2 鳞茎作为外植体最适灭菌方法筛选 |
| 2.3.3 不同层次的鳞片诱导实验 |
| 2.3.4 鳞片不同接种方式的丛生芽诱导 |
| 2.3.5 鳞片作为外植体的启动培养基的筛选 |
| 2.3.6 增殖培养基的筛选 |
| 2.3.7 无机盐、生长素水平对生根壮苗的影响 |
| 2.3.8 小鳞茎增大培养基的筛选 |
| 2.4 讨论与结论 |
| 2.4.1 外植体对无菌体系建立的影响 |
| 2.4.2 不同激素配比在组织培养生长过程中的影响 |
| 3.TR与PR最佳低温春化时间 |
| 3.1 试验材料 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 碳水化合物含量的测定 |
| 3.2.2 内源激素含量测定 |
| 3.2.3 酚类物质及其酶活性的变化 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 碳水化合物含量的测定 |
| 3.3.2 低温处理下内源激素含量的变化 |
| 3.3.3 不同低温处理时间碳水化合物与内源激素及酚类物质的相关性分析 |
| 3.3.4 不同低温处理时间酚类物质及其酶的相关性分析 |
| 3.4 讨论与总结 |
| 3.4.1 可溶性糖和淀粉含量对低温春化的影响 |
| 3.4.2 生长促进素和生长抑制素含量对低温春化的影响 |
| 3.4.3 总酚含量对低温春化的影响 |
| 4.TR促花研究 |
| 4.1 试验材料 |
| 4.2 试验方法 |
| 4.2.1 各花期百合开花品质 |
| 4.2.2 开花花期的影响 |
| 4.2.3 内源营养物质的测定 |
| 4.2.4 内源激素的测定 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 不同Ca~(2+)水平对TR开花品质的影响 |
| 4.3.2 不同Ca~(2+)水平对TR花期的影响 |
| 4.3.3 不同Ca~(2+)水平对TR内源激素IAA含量的影响 |
| 4.3.4 不同Ca~(2+)水平对TR内源激素GA_3含量的影响 |
| 4.3.5 不同Ca~(2+)水平对TR内源激素ABA含量的影响 |
| 4.3.6 不同Ca~(2+)水平对TR内源激素ZR含量的影响 |
| 4.3.7 不同Ca~(2+)水平对TR内源激素比值的影响 |
| 4.3.8 不同Ca~(2+)水平对TR内源营养物质可溶性糖含量的影响 |
| 4.3.9 不同Ca~(2+)水平对TR内源营养物质淀粉含量的影响 |
| 4.3.10 不同Ca~(2+)水平对TR内源营养物质可溶性蛋白质含量的影响 |
| 4.3.11 不同因素与到花日数相关性分析 |
| 4.4 讨论 |
| 4.4.1 TR促花过程中开花品质与花期的变化 |
| 4.4.2 TR促花过程中内源激素的变化 |
| 4.4.3 TR促花过程中内源营养物质的变化 |
| 5 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.2 本研究创新点 |
| 5.3 展望 |
| 参考文献 |
| 缩略语表 |
| 本人简介 |
| 导师简介 |
| 致谢 |
（3）亚洲百合无性繁殖小鳞茎技术的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| 英文摘要 |
| 1 引言 |
| 1.1 研究目的与意义 |
| 1.2 我国百合种球的生产现状 |
| 1.3 百合种球繁殖的研究进展 |
| 1.3.1 百合的繁殖方法 |
| 1.3.2 百合鳞片组织培养的研究进展 |
| 1.3.3 百合鳞片扦插繁殖的研究进展 |
| 1.3.4 百合碳水化合物含量研究进展 |
| 1.3.5 百合小鳞茎发育过程的研究进展 |
| 1.4 技术路线 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 植物材料 |
| 2.1.2 实验药品 |
| 2.1.3 实验器材 |
| 2.1.4 实验条件 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 百合鳞片扦插繁殖 |
| 2.2.2 百合鳞片的组织培养繁殖 |
| 2.2.3 百合生理指标检测 |
| 2.2.4 小鳞茎发育过程中细胞学观察 |
| 2.3 数据处理与分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 百合的扦插 |
| 3.1.1 百合鳞片的不同部位对小鳞茎诱导分化的影响 |
| 3.1.2 四种因素对百合鳞茎诱导分化的影响 |
| 3.2 百合的组织培养 |
| 3.2.1 不同灭菌时间对百合鳞茎诱导分化的影响 |
| 3.2.2 不同激素浓度配比对百合诱导分化的实验结果 |
| 3.3 小鳞茎生长过程中碳水化合物的变化 |
| 3.3.1 蔗糖含量的测定 |
| 3.3.2 可溶性糖含量的测定 |
| 3.3.3 淀粉含量的测定 |
| 3.4 小鳞茎形成过程组织学观察 |
| 3.4.1 扦插过程中小鳞茎的外部形态发生变化 |
| 3.4.2 小鳞茎的组织形态发生过程 |
| 4 讨论 |
| 4.1 扦插基质的选择对鳞片扦插的影响 |
| 4.2 百合种球的预处理对鳞片扦插的影响 |
| 4.3 引起百合鳞茎污染率高原因 |
| 4.3.1 扦插繁殖中鳞片污染的原因 |
| 4.3.2 组织培养中鳞片污染的原因 |
| 4.4 植物生长调节剂配比对不同基因型百合生长的影响 |
| 4.5 小鳞茎生长过程中碳水化合物的变化 |
| 4.6 小鳞茎的生长过程中形态学的变化 |
| 4.7 不同部位的鳞片对诱导小鳞茎的影响 |
| 5 结论 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 |
（4）老鸦瓣组织培养及试管鳞茎诱导技术研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 符号及缩略语说明 |
| 第一章 文献综述 |
| 1 百合科植物离体培养植株再生途径研究 |
| 1.1 百合科植物离体培养研究概况 |
| 1.2 百合科植物植株再生途径研究进展 |
| 2 试管鳞茎研究进展 |
| 2.1 试管鳞茎的诱导途径研究 |
| 2.2 试管鳞茎诱导途径的影响因素 |
| 2.3 试管鳞茎形成、膨大影响因素 |
| 2.4 试管鳞茎休眠 |
| 2.5 试管鳞茎生根及移栽 |
| 3 老鸦瓣与光慈姑研究综述 |
| 3.1 老鸦瓣与光慈姑概述 |
| 3.2 老鸦瓣本草考证及系统分类研究 |
| 3.3 老鸦瓣栽培生理及生物学特性研究 |
| 3.4 老鸦瓣化学成分及药理学研究 |
| 3.5 老鸦瓣组织培养研究 |
| 4 研究目的及意义 |
| 第二章 老鸦瓣外植体消毒和无菌培养物建立 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同温度处理对老鸦瓣鳞茎的影响 |
| 2.2 外植体消毒 |
| 3 讨论 |
| 3.1 鳞茎预处理和取材时期对外植体活力的影响 |
| 3.2 外植体消毒方法 |
| 3.3 抗生素在外植体消毒上的应用 |
| 第三章 老鸦瓣芽茎诱导愈伤组织分化丛生芽 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 愈伤组织的诱导 |
| 2.2 不同芽茎部位诱导愈伤组织效果比较 |
| 2.3 愈伤组织增殖 |
| 2.4 愈伤组织分化不定芽 |
| 2.5 不同愈伤组织类型分化不定芽效果比较 |
| 2.6 芽茎愈伤组织途径的丛生芽增殖 |
| 3 结论与讨论 |
| 3.1 外植体类型对初代诱导结果的影响 |
| 3.2 激素配比对愈伤组织诱导分化的影响 |
| 3.3 影响愈伤组织诱导及生长的其他因素 |
| 第四章 老鸦瓣子茎诱导不定芽及丛生芽增殖 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 外植体直接诱导不定芽 |
| 2.2 芯芽外植体直接诱导不定芽 |
| 2.3 子茎不定芽增殖 |
| 2.4 生根诱导 |
| 3 讨论 |
| 3.1 TDZ在植物组织培养中的应用 |
| 3.2 不同外植体直接诱导芽效果比较 |
| 第五章 老鸦瓣试管鳞茎诱导 |
| 1 材料和方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 低温处理对老鸦瓣试管鳞茎诱导的影响 |
| 2.2 老鸦瓣试管鳞茎诱导培养基的筛选 |
| 2.3 不同浓度多效挫（PP333)对试管鳞茎诱导的影响 |
| 2.4 不同浓度水杨酸(SA)对试管鳞茎诱导的影响 |
| 2.5 不同高温温度对试管鳞茎诱导的影响 |
| 2.6 光照处理对试管鳞茎诱导的影响 |
| 2.7 试管鳞茎移栽萌发 |
| 3 讨论 |
| 3.1 试管鳞茎诱导途径探讨 |
| 3.2 激素和培养基成分对试管鳞茎诱导的影响 |
| 3.3 培养条件对试管鳞茎诱导的影响 |
| 全文结论与创新点 |
| 1 全文结论 |
| 2 创新之处 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 攻读硕士学位期间发表论文及申请专利 |
| 致谢 |
（5）重庆野生百合花蕾诱导再生植株技术研究（论文提纲范文）
| 0 引言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验时间、地点 |
| 1.2 试验材料 |
| 1.3 试验方法 |
| 1.4 生根苗移栽 |
| 2结果与分析 |
| 2.1污染情况 |
| 2.2 诱导培养 |
| 2.3 增殖培养 |
| 2.4 生根培养 |
| 2.5 移栽试验 |
| 3 结论 |
| 4 讨论 |
（8）低温和赤霉素对亚洲百合开花及鳞茎繁殖的效应（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 试验设计 |
| 1.2.1 鳞茎不同冷藏温度处理 |
| 1.2.2 鳞茎不同冷藏时间处理 |
| 1.2.3 不同大小鳞茎冷藏处理 |
| 1.2.4 设施栽培处理 |
| 1.2.5 赤霉素+低温处理 |
| 1.3 栽培措施与观察指标 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 亚洲百合生物学特性观察 |
| 2.2 鳞茎低温处理对开花的影响 |
| 2.3 鳞茎低温处理时间对开花的影响 |
| 2.4 鳞茎大小对开花的影响 |
| 2.5 设施栽培对百合开花的效应 |
| 2.6 赤霉素与低温处理对百合开花及新球发育的影响 |
| 2.7 赤霉素与低温处理对二次开花及新球发育的影响 |
| 3 讨 论 |
（9）农杆菌介导的普利安娜百合鳞茎直接分化受体系统的建立（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 外植体灭菌处理 |
| 1.3 鳞片离体再生 |
| 1.4 鳞片不同部位切块不定芽诱导 |
| 1.5 小叶离体再生 |
| 1.6 试管苗鳞茎诱导 |
| 1.7 卡那霉素 (Km) 抗性筛选 |
| 1.7.1 试管苗鳞片叶卡那霉素抗性筛选 |
| 1.7.2 鳞片卡那霉素抗性筛选 |
| 1.8 生根培养 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 影响鳞片不定芽分化的因素 |
| 2.1.1 不同激素组合对鳞片不定芽诱导的影响 |
| 2.1.2 鳞片不同部位对不定芽分化的影响 |
| 2.2 小叶不定芽的分化 |
| 2.3 试管苗鳞茎诱导 |
| 2.4 卡那霉素抗性筛选 |
| 2.5 生根培养 |
| 3 讨 论 |
（10）农杆菌介导的ACO基因RNA干扰表达载体转化百合的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 转基因植物的概念 |
| 1.2 转基因技术改良的园艺性状 |
| 1.2.1 改变花色 |
| 1.2.2 控制花型 |
| 1.2.3 调控花期 |
| 1.2.4 花香改良 |
| 1.2.5 控制切花衰老 |
| 1.2.6 花卉抗性基因工程 |
| 1.2.7 花卉基因工程存在的问题及展望 |
| 1.3 观赏植物遗传改良中常用的转基因方法 |
| 1.3.1 农杆菌介导转化法 |
| 1.3.2 基因枪法 |
| 1.3.3 其他转化法 |
| 1.4 乙烯生物合成基因工程 |
| 1.4.1 乙烯生物合成途径 |
| 1.4.2 乙烯与切花衰老 |
| 1.4.3 与乙烯有关的基因工程 |
| 1.5 RNA 干扰技术及其在植物中的应用研究 |
| 1.5.1 RNAi 的定义 |
| 1.5.2 RNAi 现象的发现 |
| 1.5.3 RNAi 的作用机制 |
| 1.5.4 RNAi 的特征 |
| 1.5.5 RNAi 在植物中的应用研究 |
| 1.6 百合转基因研究进展 |
| 1.6.1 百合遗传转化体系建立 |
| 1.6.2 百合遗传转化技术 |
| 1.7 本研究的目的及意义 |
| 第二章 亚洲百合鳞茎直接分化受体系统建立 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 植物材料 |
| 2.1.2 试验方法 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 不同激素组合对不定芽分化的影响 |
| 2.2.2 外植体部位对不定芽分化的影响 |
| 2.2.3 试管苗鳞茎诱导 |
| 2.2.4 生根培养 |
| 2.2.5 卡那霉素敏感性试验 |
| 第三章 亚洲百合鳞块遗传转化 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 植物材料 |
| 3.1.2 农杆菌菌株及载体 |
| 3.1.3 培养基 |
| 3.1.4 试剂及仪器 |
| 3.1.5 缓冲液配制 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 利用冻融法将植物表达载体导入农杆菌 |
| 3.2.2 转化方法 |
| 3.2.3 鳞片叶的转化 |
| 3.2.4 影响鳞块转化的因素 |
| 3.2.5 转基因植株检测 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 根癌农杆菌的转化及鉴定 |
| 3.3.2 鳞片叶的转化 |
| 3.3.3 鳞块的转化 |
| 3.3.4 亚洲百合基因组DNA 的提取 |
| 3.3.5 PCR 检测 |
| 第四章 讨论 |
| 4.1 亚洲百合鳞茎直接分化受体系统建立 |
| 4.1.1 转化途径 |
| 4.1.2 外植体取材部位对不定芽分化的影响 |
| 4.1.3 不同转化受体对不定芽分化的影响 |
| 4.1.4 卡那霉素敏感性试验 |
| 4.2 影响农杆菌介导百合遗传转化的因素 |
| 4.2.1 不同转化受体对百合转化的影响 |
| 4.2.2 酚类化合物（AS）的加入对百合转化效率的影响 |
| 4.2.3 不同菌液浓度及侵染时间对百合基因转化的影响 |
| 4.2.4 NH_4NO_3 浓度对百合转化的影响 |
| 第五章 结论 |
| 5.1 建立了亚洲百合‘普利安娜’直接分化受体系统 |
| 5.2 建立了亚洲百合‘普利安娜’遗传转化体系 |
| 5.3 获得抗性植株及转基因植株 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 英文缩略词 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
四、百合顶芽离体诱导小鳞茎及开花球培育（论文参考文献）
- [1]两种雄性不育百合组培快繁体系的建立[J]. 韩淞名,孟庆雪,吴彦霏,闫凯丽,胡婉,樊金萍. 北方园艺, 2021(20)
- [2]杂交百合后代微繁与促花研究[D]. 李慧琳. 北京林业大学, 2020(06)
- [3]亚洲百合无性繁殖小鳞茎技术的研究[D]. 郑鑫. 东北农业大学, 2017(07)
- [4]老鸦瓣组织培养及试管鳞茎诱导技术研究[D]. 朱丽芳. 南京农业大学, 2014(08)
- [5]重庆野生百合花蕾诱导再生植株技术研究[J]. 徐茜,余鸿燕,徐燕,黎华,廖采琴. 中国农学通报, 2014(07)
- [6]亚洲百合试管鳞茎诱导、开花球培育及促成栽培技术研究[A]. 黄敏玲,陈诗林,钟淮钦. 2009中国球根花卉年会交流论文集, 2009
- [7]火百合花器的鳞茎诱导和增殖培养研究[J]. 周俊辉,周厚高,林丽婵,卢俊图. 广西植物, 2008(06)
- [8]低温和赤霉素对亚洲百合开花及鳞茎繁殖的效应[J]. 陈诗林,黄敏玲. 吉林农业大学学报, 2007(05)
- [9]农杆菌介导的普利安娜百合鳞茎直接分化受体系统的建立[J]. 赵欢蕊,刘雅莉,王跃进. 西北农业学报, 2007(04)
- [10]农杆菌介导的ACO基因RNA干扰表达载体转化百合的研究[D]. 赵欢蕊. 西北农林科技大学, 2007(06)